miR-192-5p参与SCN5A基因3’UTR调控机制的研究

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目的:通过双荧光素酶报告基因载体实验验证我们前期预测的miR-192-5p能否调控SCN5A基因3UTR区域。之后又研究了miR-192-5p对钠通道电生理性质的影响以及对SCN5A基因转录和蛋白表达的影响,探索miR-192-5p在SCN5A基因调控中的作用,为研究此类疾病的发病机制和防治提供新的思路。  方法:1.构建荧光素酶报告基因pMIR-REPORT-SCN5A-3UTR-T或pMIR-REPORT-SCN5A-3UTR-C,再将报告基因和miR-192-5p或阴性对照NC-miRNA以及pRL-TK载体共转入HCT116细胞.使用Dual-Glo荧光素酶检测试剂盒检测荧光素酶活性。  2.构建重组质粒PHL-hH1-SCN5A-3-UTR。  3.利用全细胞膜片钳记录技术检测miR-192-5p对钠电流的影响。  4.利用实时荧光定量PCR技术来检测miR-192-5p对SCN5A基因mRNA水平的影响。  5.利用Western blot技术来检测miR-192-5p对SCN5A基因蛋白表达水平的影响。  结果:1.DNA测序证实重组基因pMIR-REPORT-SCN5A-3UTR-T,pMIR-REPORT-SCN5A-3UTR-C和口PHL-hH1-SCN5A-3-UTR构建成功。  2.与无义miRNA相比,转染miR-192-5p后可使荧光素酶报告重组子pMIR-REPORT-SCN5A-3UTR-T或pMIR-REPORT-SCN5A-3UTR-C的荧光素酶活性降低40%-50%左右。  3.全细胞膜片钳记录技术测得结果分析, miR-192-5p与无义miRNA相比能够显著降低钠电流密度且下降比例达40%。  4.实时定量PCR结果分析:通过在SW620细胞中转染miR-192-5p以及NC-miR,来检测内源性SCN5A基因表达水平并评估SCN5A基因的mRNA表达水平。其结果表明,与对照组相比,miR-192-5p能够显著降低SCN5A mRNA的水平,虽然减少的幅度只有17%(P值=0.0064)  5.Western blot实验结果分析:通过在SW620细胞中转染miR-192-5p以及NC-miR,并从转染过的SW620细胞中提取蛋白。结果表明,miR-192-5p能够调控Nav1.5蛋白的表达水平,与无义miRNA相比,Nav1.5的水平显著降低了66%(P=0.0023)  结论:1.证明了SCN5A的3-UTR中含有的靶结合位点miR-192-5p,且能够下调SCN5A的表达。  2.miR-192-5p能够影响钠电流,使电流密度降低。  3.miR-192-5p能够降低SCN5A的mRNA水平。  4.miR-192-5p能够显著减少SCN5A编码的钠通道蛋白Nav1.5的表达。这些结果都表明miR-192-5p在Nav1.5的转录后调控起着重要作用,为由SCN5A基因引起的心律失常疾病提供了新的靶点。
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