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在抗肿瘤等方面,IL-18具有潜在的应用价值。之前关于重组人IL-18表达的研究主要是原核表达系统,不仅表达量低,而且活性低,分离纯化也较困难。为此,本文选用毕赤酵母菌GS115为宿主菌,成功构建了pPIC9K-rhIL-18表达载体,从重组毕赤酵母菌中得到能正确表达的工程菌Pichia pastoris GS115/hIL-18,然后进一步探讨其3L罐规模的发酵条件、产物纯化工艺以及体外的生物学作用。本文首先对重组表达载体pPIC9K-rhIL-18进行鉴定,并将其经电转化整合到毕赤酵母受体菌GS115的基因组中,再通过基因组PCR鉴定和筛选,MD板筛选单克隆,BMGY培养基诱导培养,SDS-PAGE和Western Blot蛋白鉴定等检测,最终得到能正确表达的重组菌株。本文发现不同的起始诱导菌体密度、温度、pH、溶解氧体积分数(DO)和甲醇诱导浓度等培养条件均影响3L罐规模rhIL-18的表达水平。经研究得到最佳表达条件:一级种子接入1.5LBSM培养基,起始诱导菌体密度为600,发酵过程中DO保持在20%左右,最佳pH为6.0,诱导温度23℃,甲醇诱导浓度为0.25%,整个发酵过程通过发酵罐控制软件系统进行在线控制和数据采集。本文初步摸索了rhIL-18分离纯化的工艺条件,研究结果显示,采用低温离心除去菌体,0.22μm膜过滤,30kD和10kD膜超滤,低温乙醇结合等电点沉淀,疏水层析的分离纯化方法,可以得到纯度在90%左右,收率42%的rhIL-18。本文通过MTT法和Hoechst33258染色检测了rhIL-18对人肝癌细胞株BEL-7402、人肝癌细胞株QGY-7703、人肝癌细胞株QSG-7701、人宫颈癌细胞株HeLa和人乳腺癌细胞株MCF-7的体外生物学作用,研究发现rhIL-18均能抑制这五种癌细胞的活性,并且其抑制程度与rhIL-18的浓度成正比;此外,rhIL-18还能促进上述五种细胞不同程度的凋亡。从而为进一步研究rhIL-18的生物学作用机理奠定了基础。