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目的：完成大鼠FcγRIIB 慢病毒诱导表达载体的构建，并且对大鼠FcγRIIB 慢病毒诱导表达载体在 HT-1080 细胞表面是否能够稳定、可控地表达进行检验，并开始对FcγRIIB慢病毒诱导表达载体转染不成熟树突状细胞后，对其抗原呈递功能的影响进行研究。 方法：以Lewis 大鼠m RNA 为模版逆转录获得FcγRIIB 基因片段，在慢病毒表达质粒 TRE中克隆插入FcγRIIB 基因片段，完成FcγRIIB 慢病毒表达重组质粒的构建。使用FcγRIIB慢病毒表达重组质粒与Lenti-X HTX慢病毒包装系统转染HEK293T细胞,收获表达病毒。将慢病毒调节质粒Tet-on3G与Lenti-X HTX包装系统转染HEK293T细胞，收获调节病毒。表达病毒和调节病毒共感染HT-1080细胞，免疫荧光观察HT-1080细胞，在强力霉素（Dox）梯度浓度的诱导下FcγRIIB的表达。培养DA大鼠骨髓来源不成熟树突状细胞（Immature dendritic cell imDC），流式细胞检测经过免疫磁珠分选的imDC的纯度；流式细胞检测磁珠分选后imDC表面共CD80、CD86、CD40、MHC-II表达量。表达病毒与调节病毒共感染imDC，并加入不同浓度Dox对imDC诱导，免疫荧光染色观察imDC细胞表面FcγRⅡB的表达；流式细胞检测转染后imDC细胞表面FcγRIIB的表达率； Western blot 法在转录后蛋白水平对FcγRIIB的表达进行检测，流式细胞术检测转染后imDC表面CD80、CD86、CD40、MHC-II在细胞表面表达。 结果：利用PCR、多克隆位点酶切及DNA测序技术对重组质粒进行鉴定，测序结果表示目的片段DNA序列与Gene Bank 显示的FcγRIIB 基因序列经过Blast比对同源性达100%。病毒感染后的HT-1080细胞，经 Dox 诱导表达FcγRIIB，免疫荧光检测数据显示，慢病毒载体可以使目的基因FcγRIIB在HT-1080 细胞可控地表达。不成熟树突状细胞磁珠分选后流式检测结果：OX62阳性表达率：93%；流式检测细胞表面共刺激分子CD80、CD86、CD40、MHC-II阳性表达率分别是 11.6%、11.48%、9.25%、12.35%。免疫荧光结果验证了imDC细胞经过病毒转染后，能够上调FcγRIIB在其表面的表达；流式细胞检测FcγRIIB表达水平与诱导剂剂量正相关；Western blot法结果显示FcγRIIB蛋白表达水平随诱导剂剂量增加而升高；流式细胞术检测诱导慢病毒转染imDC后细胞表面共刺激分子CD80、CD86、CD40、MHC-II类分子阳性表达率分别为6.44%、8.25%、5.38%、11.62%。 结论 成功构建了FcγRIIB 慢病毒诱导表达载体。慢病毒感染大鼠骨髓来源不成熟树突状细胞后过表达 FcγRIIB 基因，并且能够下调不成熟树突状细胞的抗原提呈作用。