GSH对氧自由基介导的细胞凋亡保护机制研究

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活性氧基(ROS)占体内自由基的绝大多数。当氧化反应增强和/或抗氧化能力受损时,氧化还原动态平衡遭到破坏而向着有利于氧化损伤的方向发展,即产生氧应激(Oxidative Stress,OS)。活跃的自由基将导致脂质,蛋白,DNA和RNA的氧化损伤,从而导致生理机能和细胞形态的损害。 细胞凋亡在维持神经系统的正常发育和功能中起着重要作用。氧应激状态可能是细胞凋亡发生的一个重要媒介,许多凋亡刺激可使胞内ROS产生或伴有氧应激,而许多凋亡的抑制剂具有抗氧化活性或加强细胞抗氧化能力。凋亡过程需要能量,被细胞内氧化还原反应准确地调节。然而胞内氧化还原变化何时并如何调节凋亡过程,还有在这个细胞调节过程中涉及的对氧化还原敏感的特殊分子,目前尚不明确。 在本研究中,为验证氧应激与凋亡之间的机制联系,了解氧应激与细胞凋亡引发神经元损伤的机制,我们设计如下实验:给予ROS能否引发凋亡;凋亡是否伴随ROS的诱导;给予外源性的抗氧化剂能否阻止凋亡发生;探讨抗凋亡蛋白Bcl-2是否具有抗氧化作用;由于抗氧化剂的剂量很少被关注,因此给予不同剂量的GSH,是否存在剂量依赖关系。 将雄性Wiseer大鼠随机分4组,N=6。1)氧应激组:左侧纹体内注射100μmol/l的CumOOH,注射量为30μl。2)对照组:左侧纹体内仅注射生理盐水。3)GSH给药组:由鼠尾静脉输入GSH,18小时重复一次,共3次。第3次注射后18小时,左侧纹体内给予100μmol/ml的CumOOH。该组又分成GSH大剂量给药组:鼠尾静脉输入GSH120mg/kg。以及GSH小剂量给药组:鼠尾静脉输入GSH75mg/kg。以上动物均于实验结束2h断头处死。 博土研究生学位论文 用高效液相-电化学检测技术测定纹体及皮层中 DHBA和 SA含量;应 用免疫组织化学技术,末端脱氧核昔酸转移酶介导的dUTP缺口末端标记 (TU’N’EL)法分别检测 Bcl-2细胞阳性率,原位细胞死亡。 通过实验得出以下结果: 1.利用水杨酸捕捉技术,高效液相-电化学检测DHBA/SA来反映”OH 的含量,灵敏度高(可达10””~10-’‘mol几),特异性好。并且水杨酸(SA) 无毒,便子从各种组织中提取,动物实验或临床均可应用等,这种亘接测定DH 的方法为研究自由基提供了可靠的手段。 2.纹体内注入枯烯过氧化氢(Cumene Hydroperoxide,Cum00H),一种氢 过氧有机化合物,能迅速引发组织的脂质过氧化反应,HPLC检测到鼠脑皮层 及纹体的DH水平较对照组上升,分别为对照组的Zll%、24%(P t 005)。 因此Cum00H-氧应激模型成立,可用于研究氧应激。 3.免疫组织化学技术检测:氧应激时皮层及纹体细胞凋亡的抑制蛋白 BC12的阳性率降低,为分别为对照组的 43%和 45%(P<005)。 4.TUNEL法检测:对照组未见凋亡细胞。发现给予Cum00H Zh后皮层 及纹体有较多的细胞凋亡数目出现。 5预先给予三次不同剂量GSH,HPLC观察到GSH能对抗氧应激,降低 羟自由基水平。GSH75组皮层及纹体的DH水平分别下降为氧应激组的68% 和啊%(P<005人*sH12O组皮层及纹体的*H水平分别下降为氧应激组 的79%和6州(P<0刀5人*SH是细胞中最重要的非酶性小分子抗氧化剂 之一,维持氧化还原能力,保护细胞免遭氧化损害。 6.但GSH这种抗氧化效应不呈剂量依赖关系:小剂量的GSH能减少 细胞凋亡数目,皮层及纹体分别为氧应激组的狈%和M%(P<0刀5)。增加 BCI-2的细胞阳性率,皮层及纹体分别为氧应激组的167o和150o(P<0.05)。 而大剂量的GSH则不能,细胞凋亡数目,B。12的细胞阳性率与氧应激组相 比无明显差异。 3 博士研究生学位论文 结论:纹体内给予Cum00H可引起鼠脑急性氧应激,导致DH水平上升, 因此该氧应激模型成立。氧应激时细胞凋亡数目增加,说明氧应激能够介导 凋亡。氧应激时抑制细胞凋亡蛋白B。12的阳性率降低。而适当剂量的抗氧 化剂-GSH能通过降低氧应激水平,上调Bcl-2的表达,抑制Cum00H诱导的 细胞凋亡而保护神经细胞。B。1.2也与ROS有密切关系。B。1.2缺乏导致细 胞不能对抗氧应激而易发凋亡。凋亡与氧应激和抗氧化剂的关系,说明它对 氧化还原反应敏感。而GSH作用的双相性说明外源性的抗氧化剂的剂量及 其不同抗氧化剂之间的平衡,在抗氧化损伤中可能也起重要的作用。
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