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目的：通过对感染兔人工股骨头清创术后间隔不同时间行二期翻修术，选择感染兔人工股骨头二期翻修术的最佳时机，为临床治疗提供实验基础和理论依据。方法：取健康成年日本大耳白兔96只，在建立兔人工股骨头耐甲氧西林表皮葡萄球菌(MRSE)感染动物模型的基础上，清创术后间隔不同时间行二期翻修术。根据间隔时间不同将动物随机分为清创术后即刻翻修组(S0组)、2周后翻修组(S2组)、3周后翻修组(S3组)、4周后翻修组(S4组)、6周后翻修组(S6组)和12周后翻修组(S12组)，每组16只，并于二期翻修术后8周处死。检测指标：(1)X线摄片：于兔人工股骨头置换术后、清创术前、二期翻修术前、后和处死前，行双髋关节X线摄片检查。(2)细菌培养：于清创术时、二期翻修术时和动物处死前，取关节腔内肉芽组织或假膜组织行细菌培养。(3)罗丹明标记的兔抗SE免疫血清染色：在制备罗丹明标记的兔抗SE免疫血清的基础上，于清创术时、二期翻修术时及动物处死前，取关节腔内肉芽组织或假膜组织，常规切片、脱腊至水后行罗丹明标记的兔抗SE免疫血清染色，激光共聚焦扫描显微镜观察。(4)血清C-反应蛋白(CRP)和血沉(ESR)：于兔人工股骨头置换术前、清创术前、二期翻修术前和动物处死前，分别检测血清CRP和ESR。(5)人工股骨头拔出实验：于动物处死后进行。(6)病理观察：动物处死前取关节腔内肉芽组织或假膜组织，常规切片、HE染色后光镜观察。结果：1、X线检查：兔人工股骨头置换术后所有人工股骨头均在位。清创术前和动物处死前分别有11只和12只实验动物发生关节脱位。2、细菌培养：SE接种4周后清创术前兔人工股骨头的感染率为100%。二期翻修术时S0组、S2组、S3组、S4组、S6组和S12组的感染率为100%，35.7%、<WP=8>30.7%、13.3%、6.2%和6.2%，S2组～S12组的感染率均较S0组明显降低(P<0.05)。动物处死前各组的感染率分别为26.7%、42.8%、23.1%、6.7%、6.7%和7.1%，S4组、S6组、S12组的感染率均明显低于S0组(P<0.05)。3、罗丹明标记的兔抗SE免疫血清染色：清创术时所有(100%)标本均呈阳性反应；二期翻修术时S0组、S2组、S3组、S4组、S6组和S12组的阳性率分别为100%、50.0%、38.4%、13.3%、12.5%和6.2%，S2组～S12组的阳性率均较S0组明显降低(P<0.05)。动物处死前各组的阳性率分别为：33.3%、50.0%、23.1%、6.7%、6.7%和14.3%，S4组、S6组和S12组的阳性率均较S0组明显降低(P<0.05)。4、血清CRP、ESR：兔人工股骨头感染后各组均升高非常显著(P<0.01)。二期翻修术前和动物处死前S4组、S6组和S12组的CRP与清创前相比均明显下降(P<0.05)。但二期翻修术前仅仅S12组的ESR明显下降(P<0.05)，至动物处死前S4组、S6组的ESR也明显下降(P<0.05)。5、人工股骨头拔出实验：人工股骨头拔出力量左侧均低于右侧，S4组、S6组和S12组的百分率明显高于S0组、S2组(P<0.05)。6、光镜观察：感染控制动物关节内假膜组织纤维增生，炎细胞浸润较少；而感染未控制者见较多炎细胞浸润，增生纤维变性等。结论：1、在设计兔人工股骨头的基础上，于兔人工股骨头置换术中接种1×108CFU的MRSE可较可靠地建立兔人工股骨头感染模型。2、对感染兔人工股骨头行清创术后，间隔不同时间后可再次行二期翻修术，因此，也可成功地建立感染兔人工股骨头二期翻修术模型。3、细菌培养是检测人工股骨头感染的“金标准”，罗丹明标记的兔抗SE血清免疫染色法较敏感，有助于对感染的监测。4、动态观察CRP、ESR对感染兔人工股骨头的变化、转归有重要意义，其中以CRP的动态变化更精确，而ESR只能作为辅助参考指标。5、感染兔人工股骨头二期翻修术的较佳时机是清创术后4～6周。