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本试验拟探究壳寡糖对幼建鲤生产性能、脂肪代谢、非特异性免疫功能及肠道菌群的影响。选择初始体重为(8.78+0.38)g的健康幼建鲤225尾,随机分为5组,每组3个重复,每个重复15尾鱼,分别饲喂壳寡糖添加量为0(对照组)、0.30%、0.60%、0.90%和1.50%的饲料。饲养试验周期为80 d,试验结束后,分别对幼建鲤进行指标测试和攻毒试验。主要结果如下：(1)壳寡糖可以提升幼建鲤的WGR、SGR和肝胰脏指数(P>0.05),对肠长指数、肠体指数、肠皱襞高度、肠皱襞密度和肠壁厚度均有显著提高(P<0.05)。WGR与前、中、后肠皱襞高度呈显著或极显著正相关(r1=+0.834,P<0.05：r2=+0.973,P<0.01；r3=+0.868,P<0.05),表明壳寡糖促增重作用可能与其促进肠道发育有关；同时,壳寡糖能极显著的降低幼建鲤肌肉中粗脂肪和失水率(P<0.01),对肌肉MDA含量也具有一定的改善。(2)壳寡糖显著降低幼建鲤血浆中TG和TCH的含量(PP<0.05),极显著提高幼建鲤血浆中HDL-C的含量(P<0.01)。粗脂肪与血浆HDL-C口肌肉MDA呈显著或极显著相关(r1=-0.928,P<0.05；r2=+0.979,P<0.01),说明全鱼脂肪含量可能与血浆中HDL-C及肌肉中MDA的含量有关。(3)壳寡糖极显著提高幼建鲤头肾指数、白细胞吞噬率、白细胞吞噬指数、红细胞吞噬率、红细胞吞噬指数、血浆和肝胰脏T-AOC(P<0.01),极显著降低血浆和肝胰脏中MDA的含量(P<0.01)。白细胞吞噬率与肝胰脏T-AOC、血浆T-AOC和血浆MDA含量呈显著或极显著相关(r1=+0.825,P<0.05；r2=+0.722,P<0.05；r3=-0.968,P<0.01),表明壳寡糖可能是通过提高幼建鲤的抗氧化能力,进而提高吞噬细胞的非特异性免疫能力。(4)壳寡糖显著或极显著增加幼建鲤前、中、后肠道内双歧杆菌和乳酸杆菌数量(P<0.05或P<0.01),极显著的降低大肠杆菌的数量(P<0.01)。前、中、后肠双歧杆菌与大肠杆菌、乳酸杆菌呈显著或极显著相关(r1=-0.958,P<0.01；r2=+0.948,P<0.05：r3=-0.917,P<0.05；r4=+0.950,P<0.01；r5=-0.942,P<0.05；r6=+0.935,P<0.05)。说明壳寡糖抑制肠道内有害菌群生长可能与有益菌群的增殖有关。(5)壳寡糖能提高攻毒后幼建鲤的存活率,减少发病率。组织切片观察显示,壳寡糖对攻毒后幼建鲤头肾肾间质充血、肾间细胞增生、肾小管毛细血管充血和扩展；脾脏红髓和白髓结构破坏、脾间充血、淋巴细胞缺失；肠粘膜上皮细胞大量脱落、杯状细胞破坏、肠皱襞粘合等现象均有一定的缓解作用。同时,壳寡糖还可以显著降低攻毒后幼建鲤肠道内嗜水气单胞菌的数量(P<0.05)。存活率与脾脏指数、头肾指数、白细胞吞噬率、大肠杆菌、双歧杆菌、乳酸杆菌和嗜水气单胞菌呈显著或极显著相关(r1=+0.925,P<0.05；r2=+0.869,P<0.05；r3=+0.887,P<0.05：r4=-0.889,P<0.05；r5=+0.987,P<0.01；r6=+0.883,P<0.05；r7=-0.971,P<0.01),说明壳寡糖增强幼建鲤抗病力与非特异性免疫和肠道免疫有关。综上所述,饲料中添加壳寡糖可以提高幼建鲤的生产性能,增强非特异性免疫能力,影响部分脂肪代谢指标：同时,壳寡糖还能改善幼建鲤肠道菌群的结构,提高幼建鲤对嗜水气单胞菌的抗病力。在本试验条件下,通过线性回归分析,以WGR为标识(Y=-20.865x2+40.899x+102.31,R2=0.926,P>0.05,X极值=0.9801),幼建鲤饲料中壳寡糖的适宜添加量为0.9801%。