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非离子表面活性剂随废水进入水体,产生大量持久性泡沫,这些大量不易消失的泡沫在水面形成隔离层,减弱了水体与大气之间的气体交换,致使水体发臭;同时具有生物毒性直接威胁到水生动植物的生存。生物法常用于此类废水处理中。但低温对微生物的生长与代谢活性产生明显抑制作用。为提高低温下非离子表面活性剂的降解效果,本研究从两种不同来源的活性污泥中,在不同温度环境条件下(30℃、10℃)分离纯化筛选出具有降解聚氧乙烯(23)月桂醚(Brij-35)的菌株,并研究菌株在多种环境条件下的降解性能。通过各项低温优化调控手段,得到低温高效降解菌株。运用优质菌株于生物处理系统,测定低温生物强化系统对化学需氧量(COD)和Brij-35的去除率,对系统运行稳定性和抗冲击能力进行考察,为菌株在低温生物处理过程中提供优质菌种资源和相关数据参考。研究结果表明:
1、以Brij-35为唯一碳源(500 mg/L),分离、纯化筛选出一株在30℃具有高效降解Brij-35的ST3菌,经过鉴定为鞘氨醇单胞菌属(Sphingomonas sp),一株在10℃具有高效降解Brij-35的YX3菌,经过鉴定为不动杆菌属(Acinetobacter sp)。
2、对两株菌的降解特性进行了探究,研究表明ST3最适生长条件分别为30℃,pH8;YX3最适生长条件为pH8,最适初始Brij-35浓度为250mg/L。对ST3菌使用低温优化调控手段,发现连续低温驯化为最佳低温驯化方式,得到的ST3低温驯化菌24h的COD和Brij-35去除率分别提高60.54%、70.3%。外源添加投加物调控表明能在短期内提高菌株低温下Brij-35的降解速率,但没有缩短总体降解时间。
3、拟合ST3菌、ST3低温驯化菌和YX3菌的低温降解动力学方程,表明在10℃下,ST3对Brij-35的降解符合零级动力学方程,ST3低温驯化菌和YX3菌均符合一级动力学方程,相关系数(R2)均大于等于0.98,半衰期(t1/2)分别为24h、6.4h、6.1h。ST3菌经过低温优化调控后比未经低温优化调控的ST3菌的降解周期缩短了73%。
4、加入生物处理系统,发现B和C两种生物强化启动方式均能提高系统抗水力及有机荷的能力,增强系统稳定性,加速启动时间。在10℃抗冲击运行阶段,2#泥菌混合系统降解效果最优,且稳定性良好;6℃低温胁迫下,3#菌泥结合系统更具有优势。
5、对生物强化系统进行群落结构分析表明,强化菌剂中的Acinetobacter属在系统中占据优势地位,Sphingomonas属在运行过程中逐渐被淘汰,其在低温下的竞争力、生长稳定性和降解稳定性弱于低温菌株。
1、以Brij-35为唯一碳源(500 mg/L),分离、纯化筛选出一株在30℃具有高效降解Brij-35的ST3菌,经过鉴定为鞘氨醇单胞菌属(Sphingomonas sp),一株在10℃具有高效降解Brij-35的YX3菌,经过鉴定为不动杆菌属(Acinetobacter sp)。
2、对两株菌的降解特性进行了探究,研究表明ST3最适生长条件分别为30℃,pH8;YX3最适生长条件为pH8,最适初始Brij-35浓度为250mg/L。对ST3菌使用低温优化调控手段,发现连续低温驯化为最佳低温驯化方式,得到的ST3低温驯化菌24h的COD和Brij-35去除率分别提高60.54%、70.3%。外源添加投加物调控表明能在短期内提高菌株低温下Brij-35的降解速率,但没有缩短总体降解时间。
3、拟合ST3菌、ST3低温驯化菌和YX3菌的低温降解动力学方程,表明在10℃下,ST3对Brij-35的降解符合零级动力学方程,ST3低温驯化菌和YX3菌均符合一级动力学方程,相关系数(R2)均大于等于0.98,半衰期(t1/2)分别为24h、6.4h、6.1h。ST3菌经过低温优化调控后比未经低温优化调控的ST3菌的降解周期缩短了73%。
4、加入生物处理系统,发现B和C两种生物强化启动方式均能提高系统抗水力及有机荷的能力,增强系统稳定性,加速启动时间。在10℃抗冲击运行阶段,2#泥菌混合系统降解效果最优,且稳定性良好;6℃低温胁迫下,3#菌泥结合系统更具有优势。
5、对生物强化系统进行群落结构分析表明,强化菌剂中的Acinetobacter属在系统中占据优势地位,Sphingomonas属在运行过程中逐渐被淘汰,其在低温下的竞争力、生长稳定性和降解稳定性弱于低温菌株。